Transwell：trans是转移之意，well是小室之意，合起来的意思就是穿过小室，将小室置于培养板中，小室内称为上室，培养板内称为下室，小室底层有一张通透性的膜（一般为聚碳酸酯膜），将上下层培养液分隔开。被研究的细胞被培养在上室，由于聚碳酸酯膜有通透性，下室内培养液中的成分可以影响到上室内的细胞，从而可研究下层培养液中的成分对细胞生长、运动等的影响，且通过应用不同孔径和经过不同方法处理的聚碳酸酯膜,就可以进行共培养、细胞趋化、细胞迁移、细胞侵袭等多种方面的研究。
利用transwell侵袭实验可以检测肿瘤细胞的侵袭能力。未铺胶的transwell实验检测细胞的迁移能力，铺胶的transwell实验检测细胞的侵袭能力。迁移和侵袭是两个概念。迁移是指细胞的运动能力，而侵袭是细胞在运动的同时会分泌出消化ECM的蛋白，清除运动障碍，这个实验更能模拟人体内环境。
细胞迁移是细胞在外界信号（如：趋化因子）的作用下从一个区域转移到另一区域的运动。这个过程在在生理和病理学方面都发挥着重要的作用，比如损伤修复、细胞分化、恶性肿瘤转移、免疫细胞的迁移、组织修复等。
细胞侵袭与细胞迁移比较类似，但是“侵袭”需要细胞穿过胞外基质层（ECM）或基底膜基质层（BME），在这个过程中细胞先酶解去除ECM/BME的阻碍，从而在趋化因子浓度梯度驱使下完成从一处到另一处的移动。
实验步骤
1.基质胶的准备：4℃隔夜解冻Matrigengel，实验前转移到冰盒中；将提前准备好的冰放置冰盒中，凝胶前的操作均在冰上操作。将枪头、离心管与放有Transwell小室的24孔板放入冰盒预冷，并用预冷枪头将Matrigengel混匀。
2.基质胶铺板：稀释Matrigengel，按Matrigenge和无血清培养基以1:8的比例进行稀释；将稀释后的Matrigengel，垂直加入Transwewll上室中，均匀平铺在底部；放入培养箱（37℃，5%CO2)中3h，使Matrigengel聚合成凝胶薄膜。将上室中多余液体吸掉，在每孔中加入无血清培养基，再置于培养箱30min，进行基底膜水化。
3.制作细胞悬液：制作细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿12-24h，进一步去除血清的影响（此步骤可选择操作）；取汇合度达70%-80%的细胞进行消化，终止消化后将弃废液离心，接着用无血清培养基重悬细胞，调整细胞密度至2.5×105/mL。
4.接种细胞：在24孔板下室加入500µL含10%FBS培养基。然后用镊子将Transwell小室置于24孔板内（注意：下层培养液和小室间经常会有气泡产生，一旦产生气泡，下层培养液的趋化作用就减弱甚至消失了，在种板的时候要特别留心，一旦出现气泡，要将小室提起，去除气泡，再将小室放进培养板）；每孔加入200µL细胞悬液到Transwell上室；培养箱培养24h后可进行固定染色。（时间点可根据肿瘤细胞侵袭能力而定，一般24-48h，还需要考虑细胞状态和消化时间对细胞的影响。）
5.结果统计：用0.1%结晶紫染色5-10min，PBS洗3遍，除去未与细胞结合的结晶紫，用棉签轻轻擦拭小室的上侧，将非特异性结合于小室上表面的染料擦掉，以便后续镜检；适当风干后，在400倍显微镜下选取5个视野观察细胞并计数。
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